Эндодонтия Лазерные технологии — стратегия успеха эндодонтического лечения



Скачать 320,58 Kb.
страница2/2
Дата22.11.2016
Размер320,58 Kb.
1   2

Фотосенсибилизаторы

В естественных условиях только ограниченное число бактерий (род Porphyromonas и Prevotella) способно продуцировать эндогенные вещества, восприимчивые к воздействию света (например, порфирины), поэтому они могут быть уничтожены с помощью воздействия лазерного луча с соответствующей длиной волны. В противоположность им, для уничтожения всех остальных бактерий, а также грибов и вирусов с помощью ФАД необходимо окрасить красителем их внешние мембраны. Важно, что фотосенсибилизаторы обладают положительным зарядом. Это усиливает их связывание со стенками отрицательно заряженных клеток бактерий.



Существует множество видов фотосенсибилизаторов, которые наиболее широко используются в стоматологической практике и оказываются эффективными в борьбе с целым рядом грамположительных и грамотрицательных бактерий (15), включая многие ключевые патогены ротовой полости, такие как Streptococcus mutants и Enterococcus faecalis:

  1. хлорид толониума (толуидиновый синий);

  2. метиленовый синий;

  3. радохлорин (ООО «РАДА-ФАРМА», Россия, патент РФ №2183956);

  4. фотолон (ОАО «БЕЛМЕДПРЕПАРАТЫ», рег. №ПN015948/01, республика Беларусь);

  5. фотодитазин (Россия, рег. удост. №ФС 012а 2006/4192-06).

Для того чтобы получить оптимальные результаты при использовании ФАД, нужно учесть следующие характеристики фотосенсибилизатора:

  • тип клеток для связывания фотосенсибилизатора;

  • концентрации, при которых он наиболее эффективен;

  • длина волны и интенсивность лазерного луча, требуемые для его активации;

  • концентрация, при которой он проявит предполагаемый токсический эффект;

  • его растворяемость в воде и окружающих липидах;

  • степень ионизации.

Основным свойством фотосенсибилизаторов является их способность поглощения лазерного луча в видимом невооруженным глазом красном спектре. Наиболее распространенные комбинации фотосенсибилизатор/лазер следующие:

  • хлорид толониума с полупроводниковым лазером (длина волны: 635 nm);

  • радохлорин, фотолон, метиленовый синий, фотодитазин с полупроводниковым лазером (длина волны: 660-670 nm).

Помимо фотосенсибилизирующего красителя растворы могут включать в себя буферы, соли, регулирующие концентрацию раствора, антиоксиданты, консерванты и поверхностно-активные вещества для обеспечения поверхностного увлажнения. Буферы играют важную роль для достижения достоверного результата при использовании светоактивируемой терапии в клинических условиях. Установлено, что рН среды влияет на свойства и поведение как фотосенсибилизаторов, так и бактерий (21, 40, 41), изменяя проникновение и связывание красителя. Щелочная среда (рН8.0) имеет тенденцию создания фотосенсибилизации, противостоящей кислой (рН 4.0 и 5.0), по следующим причинам:

  • лучшее проникновение красителя в клетки (42);

  • повышенная цитотоксичность молекул синглетного кислорода (40).

Для применения метода светоактивируемой терапии в клинических условиях необходимо поместить фотосенсибилизатор на 30 секунд на область воздействия с тем, чтобы микробы смогли поглотить необходимое количество фотосенсибилизатора и стать восприимчивыми к лазерному излучению. Фотосенсибилизатор способен эффективно уничтожить нужную мишень только в том случае, если он активирован светом лазера с соответствующей длиной волны.

Многочисленные исследования, проведенные на целом ряде лабораторных моделей, включая срезы дентина, подтвердили, что воздействие обработки методом  фотоактивируемой   дезинфекции  на микробов, обычно имеющихся в ротовой полости и вызывающих воспаления пародонта, кариес и его осложнения и другие стоматологические заболевания, действительно приводит к их эффективному уничтожению (1-39).

Что касается термического эффекта, то прямые измерения температуры корневой поверхности во время эндодонтической  дезинфекции  показали, что изменения температуры были ниже 0,5 °С, а прилегающие ткани не повреждены термическими или химическими ожогами (30, 34, 36).

Применение лазера

В  фотоактивируемой   дезинфекции  обычно используются типы лазеров, действующие в видимом красном диапазоне электромагнитного спектра. К ним относятся полупроводниковые лазеры на алюминий   арсениде галлия (длина волны λ = 633-635 nm, или λ = 660-670 nm). Для эффективного уничтожения микробов с помощью  фотоактивируемой   дезинфекции  с применением лазера его выходные параметры должны быть порядка 25 J/cm2   до 200 mW. (15) Время воздействия от 60 до 120 секунд.

Алгоритм эндодонтического лечения с использованием  фотоактивируемой   дезинфекции 

После открытия системы корневого канала, экстирпации пульпы или ее остатков, избегая проталкивания инфицированных тканей за апикальное сужение, определяется точная рабочая длина с помощью К-файлов №8-15, которые подбираются в зависимости от величины канала и степени сужения. Для локализации апикального отверстия используется метод апекслокации с дополнительным рентгеновским контролем. Определение апикальной границы фиксируется с помощью ограничителя, установленного на К-файле. Далее используется техника «crown down» для прохождения и расширения канала Niti-инструментами размера №30 по ISO с конусностью 0,6 и 0,4. При каждой смене инструмента каналы промываются 3%-м раствором гипохлорида натрия. Расширение канала заканчивается использованием последнего файла размером №40 и конусностью 0,4 по ISO. После завершения механической подготовки канала производится обработка 17%-м раствором ЭДТА для удаления смазанного слоя и открытия дентинных канальцев. В завершение канал тщательно промывается дистиллированной водой для удаления применявшихся ранее растворов с высушиванием стерильными бумажными штифтами.

Для проведения ФАД после завершения механической обработки и ирригации в корневой канал с помощью стерильной эндодонтической иглы на рабочую длину вводится фотосенсибилизирующий раствор, который оставляется в течение фиксированного периода времени 60 с для того, чтобы он вступил в контакт с бактериями и диффундировал через все структуры биопленки. Рабочая длина переносится и фиксируется с помощью резинового стопера на лазерный световод. Эндодонтический излучатель вводится в канал не доходя до апекса на 4 мм. Далее активируется лазер при мощности 100-200 мВт в течение 120 с. Во время активации излучателем совершаются спиралеобразные движения вверх и вниз на 3 мм с 20-секундными интервалами. Завершается лечение полным пломбированием канала гуттаперчей с использованием метода латеральной конденсации.

В случае наличия свищевого хода при гранулематозном периодонтите после завершения механической очистки с последующей ирригацией 3%-м раствором гипохлорида и 17%-м раствором ЭДТА фотосенсибилизатор вносится как внутриканально, так и по свищевому ходу до упора (рис. 4, 5). Через 60 секунд экспонирования лазерный световод для эндодонтического лечения вводится в подготовленный канал и устанавливается у апикального сужения. После чего обрабатываются боковые стенки канала и латеральные канальцы. Далее используется универсальный световод, направляемый на проекцию апикальной области. Завершается лечение пломбированием канала с дальнейшим изготовлением ортопедической конструкции.

После проведения курса ФАД каналов корней зубов пациентов с периодонтитом обострение, которое бы вызывало беспокойство больных в течение первых 3-5 дней, наблюдалось только в 3% случаев. У пациентов с гранулематозным периодонтитом в первые 2-3 дня исчезали свищевые ходы и другие признаки воспаления. В отдаленные сроки наблюдения обострение хронического периодонтита отсутствовало, клиническое благополучие отмечено у всех пациентов (рис. 6-10).

При рентгенологическом обследовании состояния периапикальных тканей через 6 месяцев, 1 и 2 года после ФАД каналов корней зубов при хроническом гранулирующем периодонтите полная регенерация отмечена в 51,9% случаев, частичная — в 36,1%; ткани остались без изменений в 15,8% случаев. При гранулематозном периодонтите полное восстановление тканей в периапикальной области наблюдалось в 47,8%, частичное — в 39,1%; ткани остались без изменений в 13,1% случаев. Увеличение очага деструкции не наблюдалось. Следовательно, ФАД при консервативном лечении деструктивных форм хронического периодонтита способствует повышению эффективности лечения, а также регенерации костных структур в околоверхушечной области.

ФАД корневых каналов обеспечивает полную санацию во всех без исключения случаях, происходит полная элиминация микрофлоры из корневых каналов. Рефрактерных к стерилизации микроорганизмов не отмечено. Данный метод сочетает в себе управляемое бактериотоксическое воздействие активированного диодным лазером фотосенсибилизатора на очаг воспаления и биостимулирующее действие и повышает эффективность эндодонтического лечения.

Мы надеемся, что дальнейшая исследовательская работа расширит горизонт применения метода и улучшит качество жизни наших пациентов.







Рис. 1. Взаимодействие фотосенсибилизатора с микробными клетками.

Рис. 2. Образование синглентного кислорода.





Рис. 3. Отсутствие микрофлоры после  фотоактивируемой   дезинфекции .

Рис. 4. Схема введения раствора фотосенсибилизатора по ходу свища.





Рис. 5. Схема введения раствора фотосенсибилизатора внутриканально при лечении периодонтита со свищевым ходом.

Рис. 6. Рентгеновский снимок 47-го зуба. Хронический гранулематозный периодонтит.



Рис. 7. Внутриканальное введение фотосенсибилизатора.



Рис. 8. ФАД с использованием световода для эндодонтического лечения.



Рис. 9. Рентгеновский снимок 47-го зуба через 6 месяцев после ФАД.



Рис. 10. Рентгеновский снимок 47-го зуба через два года после ФАД.

Литература:

1. Рисованная О. Н. Экспериментально-клиническое обоснование бактериотоксической светотерапии воспалительных заболеваний тканей пародонта // Диссертация на соискание ученой степени доктора медицинских наук. — 2005. — 324 с.

2. Рисованный С. И., Рисованная О. Н., Масычев В. И. Способ подавления патогенной микрофлоры при лечении воспалительных заболеваний // Патент на полезную модель № 2258546 РФ, заявка № 2004102308; приоритет 26.01.04; опубл. 20.08.05. // Бюлл. изобр. — 2005, ? 23.

3. Ефремова Н. В. Клинико-функциональное обоснование лечения заболеваний пародонта методом фотодинамической терапии // Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата медицинских наук. — 2005. — 26 с.

4. Рисованная О. Н. Влияние бактериотоксической терапии на возбудителей гнойно-воспалительных заболеваний полости рта // Кубанский научный медицинский вестник: Краснодар. — 2004, № 2-3 (69-70). — 89-92 с.

5. Рисованная О. Н. Изучение влияния бактериотоксической терапии в эксперименте // Российский стоматологический журнал: Москва. — 2004, № 4. — 7-8 с.

6. Рисованная О. Н., Масычев В. И. Исследование in vitro антибактериального действия светотерапии на патогенную флору полости рта // Институт стоматологии: Санкт-Петербург. — 2004, № 3(24). — 86-88 с.

7. Рисованная О. Н. Изучение влияния бактериотоксичесой светотерапии на патогенные возбудители воспалительных заболеваний полости рта // Кубанский научный медицинский вестник: Краснодар. — 2005, № 4(70). — 25-30 с.

8. Рисованная О. Н. Сравнительная патоморфологическая характеристика репаративных процессов после проведения бактериотоксической светотерапии экспериментального воспаления тканей пародонта // Российский стоматологический журнал: Москва. — 2005, № 2. — 10-14 с.

9. Рисованная О. Н., Масычев В. И. The effect of selective photosuppresion of sensitized pathogenic microflora part 1: influence on pathogenic organisms causing pyoinflammatory processes in oral cavity // Lasers in Dentistry 11. Proteedings of SPIE. — 2005, Vol.5687. — P. 111-119.

10. Рисованная О. Н., Масычев В. И. Bacteriostatic Light Therаpy (BLT) Induce Local Production of the Antiinflammatory Cytokines in Parodont Diseases // Materials of annual meeting of American Academy of Allergy, Asthma and Immunology, San Antonio, Texas, 2005. — P. 111.

11. Рисованная О. Н. Экспериментальное изучение влияния бактериотоксической светотерпии на патогенные возбудители воспалительных заболеваний полости рта // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунологии: Москва. — 2005, № 3. — 22-27 с.



12. Рисованный С. И., Рисованная О. Н., Бычкова Н. П. Лечение периодонтита с применением бактериотоксической светотерапии // Кубанский научный медицинский вестник: Краснодар. — 2006, ? 5-6 (86-87). — 24-27 с.

13. Рисованный С. И., Рисованная О. Н.  Фотоактивируемая   дезинфекция  в эндодонтии // Дентал Юг: Краснодар. — 2006, № 6/41. — 22-25 с.

14. Рисованный С. И., Рисованная О. Н., Бычкова Н. П. Оценка эффективности использования лазерной терапии при лечении хронического периодонтита // Актуальные вопросы клиники, диагностики и лечения в многопрофильном лечебном учреждении: материалы Восьмой Всероссийской научно-практической конференции: Санкт-Петербург. — 2007, № 1 (17). — 711 с.

15. Berns T., Wilson M., Pearson G. J.: Sensitization of cariogenic bacteria killing to killing from a gelium-neon laser. J Med Microbiol 38: 401-405, 1993.

16. Bhatti M., MacRobbert A., Henderson B., Shepherd P., Cridland J., Wilson M.: Antibodi-targeted lethal photosensitization of Porphyromonas gingivalis. Antimicrob Agents Chemother 44: 2615-2618, 2000.

17. Bhatti M., MacRobert A., Meghji S., Henderson B., Wilson M.: A study of the uptake of toluidine blue O by Porphyromonas gingivalis and the mechanism of lethal photosensitization. Photochem Photobiol 68: 370-376, 1998.

18. Bhatti M., MacRobert A., Meghji S., Henderson B., Wilson M.: Effect of dosimetric and physiological factors on the lethal photosensitization of Porphyromonas gingivalis in vitro. Photochem Photobiol 65: 1026-1031, 1997.

19. Burns T., Wilson M., Pearson G. J.: Effect of dentine and collagen on the lethal photosensitization of Streptococcus mutants. Caries Res 29: 192-197, 1995.

20. Burns T., Wilson M., Pearson G. J.: Killing of cariogenic bacteria by light from a gallium aluminium arsenide diode laser. J Dent 22: 273-278, 1994.

21. Dobson J., Wilson M.: Sensitization of oral bacteria in biofilms to killing by light from a low-power laser. Arch Oral Biol 37: 883-887, 1992.

22. Griffiths M. A., Wren B. W., Wilson. M.: Killing of methicillin-resistant Stapyilococcus aureus in vitro using aluminium disulphonated phthalocyanine, a light-activated antimicrobial agent. Antimicrob Chemother 40: 873-876, 1997.

23. Jackson Z., Meghji S., MacRobbert A., Henderson B., Wilson M.: Killing of the yeast and hyphal forms of Candida albicans using a light-activated antimicrobial agent. Lasers Med Sci 14; 150-157, 1999.

24. Komerik N., Gurnow A., MacRobert A., Hopper C., Speight P. M., Wilson M.: Fluorescence biodistribution and photosensitizing activity of toluidine blue O on rat buccal mucosa. Lasers Med Sci 17: 86-90, 2002.

25. Komerik N., Hopper C., Wilson M.: Lethal photosensitization of mucositis-assosiated bacteria. J Dent Res 76: 1024-1026, 1997.

26. Komerik N., Nakanishi H., MacRobbert A. J., Henderson B., Speight P., Wilson M.: In vivo killing of Porphyromonas gingivalis by toluidine blue-mediated photosensitization in an animal model. Antimicrob Agents Chemother 47: 932-940, 2003.

27. Komerik N., Wilson M., Pool S.: The effect of photodynamic action on two virulens factors of gram-negative bacteria. Photochem Photobiol 72: 676-680, 2000.

28. Komerik N., Wilson M.: Factors influencing the susceptibility of Gram-negative bacteria to toluidine blue O-mediated lethal photosensitization. J Apple Bacteriol 92: 618-623, 2002.

29. Moritz A., Beer F., Goharkhay K., Schoop U., Strassl M., Verheyen P., Walsh L. J., Wernisch J., Wintner E.: Oral Laser Application. ISBN-10: 1850971501, Berlin, 2006.

30. Millson C. E., Wilson M., MacRobert A., Bedwell J., Bown S. G.: The killing of Helicobacter pylori by low-power laser light in the presence of photosensitizer: J Med Microbiol. 245-252, 1996.

31. Millson C. E., Wilson M., MacRobert A., Bown S. G.: Ex-vivo treatment of gastric Helicobacter infection by photodynamic therapy. J Photochem Photobiol B 32: 59-65, 1996.

32. O,Neill J. F., Hope C. K., Wilson M.: Oral bacteria in multispecies biofilms can be killed by red light in the presence of toluidine blue. Lasers Surg Med 31: 86-90, 2002.

33. O,Neill J. F., Wilson M., Wainwright M.: Comparative antistreptoccal activity of photobactericidal agents. J Chemother 15: 329-334, 2003.

34. Soukos N. S., Wilson M., Burns T., Speight P. M.: Photodynamic effects of toluidine blue on human oral kerratinocytes and fibroplasts and Streptococcus sanguis evaluanted in vitro. Laser Surg Med 18: 253-259, 1996.

35. Williams J. A., Pearson G. J., Colles M. J., Wilson M.: The effect of variable energy input from a novel light source on the photoactivated bactericidal action of toluidine blue O on Streptococcus mutans. Caries Res 37: 190-193, 2003.

36. Wilson M., Burns T., Pratten J.: Killing of Streptococcus sanguis in biofilms using a light-activated antimicrobial agent. Antimicrob Chemother 37: 377-381, 1996.

37. Wilson M., Pratten J.: Lethal photosensitization of Stapyilococcus aureus in vitro: effect of grown phase, serum, and pre-irradiation time. Laser Surg Med 16: 272-276, 1995.

38. Wilson M., Yianni C.: Killing of methicillin-resistant Stapyilococcus aureus by low-power laser light. J Med Microbiol 42: 62-66, 1995.

39. Wilson M. Photolysis of oral bacteria and its potential use in the treatment of caries and periodontal disease. J Apple Bacteriol 75; 299-306, 1993.

40. Wilson M., Wilson H.: Laser treatment. US Patent 5, 611, 793, 1997.



41. Wilson M.: Bactericidal effect of laser light and its potential use in the treatment of plaque-related diseases. Int Dent J 44: 181-189, 1994.

42. Wilson M.: Lethal photosensitization of biofilm grown bacteria. Proceeding of photochemistry: photodynamic therapy and other modalities III. SPIE 3191: 68-78, 1997

1   2


База данных защищена авторским правом ©stomatologo.ru 2017
обратиться к администрации

    Главная страница