Занятие по разделу: «Микробиология полости рта»


Проявления реакций гиперчувствительности в полости рта



страница4/4
Дата20.11.2016
Размер1,94 Mb.
ТипЗанятие
1   2   3   4

Проявления реакций гиперчувствительности в полости рта

Аллергия - состояние патологически повышенной чувствительности организма к повторному введению антигена в результате неадекватной реакции иммунной системы. Иммунные механизмы, обеспечивающие защиту организма, могут приводить к повреждению тканей, реализуясь в виде реакций гиперчувствительности.

По скорости проявления и механизму аллергические реакции можно разделить на две группы - аллергические реакции (или гиперчувствительность) немедленного типа (ГНТ) и замедленного типа (ГЗТ).

Аллергические реакции гуморального (немедленного) типа обусловлены главным образом функцией антител классов IgG и особенно IgE (реагинов). ГНТ характеризуется быстрым развитием после контакта с аллергеном (минуты). ГНТ делят на три типа.

Тип 1. Анафилактические реакции - немедленного типа, атопические, реагиновые. Они вызываются взаимодействием поступающих извне аллергенов с антителами класса IgE, фиксированными на поверхности тучных клеток и базофилов. Реакция сопровождается активацией и дегрануляцией клеток-мишеней с высвобождением медиаторов аллергии (главным образом гистамина). Примеры реакций 1 типа - анафилактический шок, атопическая бронхиальная астма, атопический дерматит, развивающиеся в ответ на введение лекарственных препаратов (например, при обезболивании новокаином).

Тип 2. Цитотоксические реакции. В них участвуют цитотоксические антитела (IgM и IgG), которые связывают антиген на поверхности клеток, активируют систему комплемента и фагоцитоз, приводят к развитию антитело-зависимого клеточно-опосредованного цитолиза и повреждения тканей. Пример – цитотоксические реакции при лекарственной аллергии.

Тип 3. Реакции иммунных комплексов. Комплексы антиген-антитела откладываются в тканях (фиксированные иммунные комплексы), активируют систему комплемента, привлекают к месту фиксации иммунных комплексов полиморфноядерные лейкоциты, приводят к развитию воспалительной реакции. В качестве аллергена могут выступать бактериальные, вирусные и медикаментозные антигены. Примеры – пародонтопатии (язвенно-некротический гингивит, пародонтоз), феномен Артюса (клинически проявляется в виде острого некротически геморрагического воспаления), постгерпетическая многоморфная эритрема.

Гиперчувствительность замедленного типа (ГЗТ) - клеточно- опосредованная гиперчувствительность или гиперчувствительность типа 4, связанная с наличием сенсибилизированных лимфоцитов. Эффекторными клетками являются Т-лимфоциты. Они распознают чужеродные антигены и секретируют различные лимфокины, стимулируя цитотоксичность макрофагов, усиливая Т- и В-иммунный ответ, вызывая возникновение воспалительного процесса. Сенсибилизацию Т-клеток могут вызывать агенты контактной аллергии (гаптены), антигены бактерий, вирусов, грибов, простейших.

Примеры - инфекционная ГЗТ при бруцеллезе, туберкулезе, актиномикозе кандидозе и др.; контактная аллергия (лекарственные стоматиты – акриловые смолы, рентгенконтрастные вещества, протезы и др.); пародонтопатии; язвенно-некротический стоматит.

Рецидивирующий афтозный стоматит относится к иммунопатологиям со смешанным типом аллергии, при котором наблюдаются реакции гиперчувствительности II, III и IV типов при наличии аутоиммунного процесса. Заболевание отличается хроническим течением и характеризуется периодическими ремиссиями и обострениями. На слизистых оболочках рта появляются афты, которые изъязвляются. Обычно это заболевание продолжается в течение всей жизни больного, с наиболее типичными проявлениями в возрасте 20-40 лет.

В этиологии и патогенезе афтозного стоматита существенное значение имеют проявления ГЗТ к ряду бактериальных антигенов, в первую очередь к стрептококку, стафилококку, кишечной палочке и другим антигенам или одновременно к нескольким бактериальным антигенам. Из афт при рецидивирующем афтозном стоматите, кроме бактерий, могут быть выделены вирусы простого герпеса и аденовирусы, которые также вызывают состояние гиперчувствительности. При развитии рецидивирующего афтозного стоматита особую роль играют аутоантигены, накапливающиеся при определенных условиях в тканях слизистой оболочки рта. Сама афта представляет собой клеточный инфильтрат, состоящий из лимфоцитов, что соответствует иммуноморфологии аллергической реакции ГЗТ, индуцированной к антигенам микроорганизмов полости рта.


Методические указания

Определение активности лизоцима в слюне

Метод основан на способности лизоцима слюны расщеплять полисахариды клеточной оболочки бактерий рода Micrococcus. Активность фермента определяют по изменению мутности суспензии микроорганизма.



Ход работы.

    1. Подписать пробирки (1:100, 1:200 и т.д.).

    2. Приготовить разведения слюны. Для этого сначала во все пробирки разлить по 1 мл физраствора. Затем в 1 пробирку (разведение 1:100) добавить 1 мл слюны, пробирку встряхнуть для перемешивания жидкости. Из 1 пробирки перенести 1 мл жидкости перенести во 2-ую пробирку (разведение 1:200), встряхнуть. Такие же манипуляции провести с остальными пробирками. Из последней 5-ой (разведение 1:1600) – 1 мл жидкости удалить для получения одинакового объема. В контрольную (6-ую пробирку) слюну не добавлять.

    3. Приготовить суспензию микрококка. Для этого взять 7-8 мл физраствора и стерильной петлей внести культуру микроорганизма.

    4. Во все пробирки (6 шт.) добавить по 1 мл суспензии микрококка.

    5. Пробы инкубировать в термостате 30 минут при 37°С.

    6. Учесть результаты: сравнить мутность исследуемых пробирок с контрольной и отметить «+» - рост микроорганизмов, «-» - отсутствие роста микроорганизма.


Контрольные вопросы

  1. Какие механизмы противомикробной защиты выделяют в зависимости от специфичности?

  2. Что такое неспецифическая и иммунологическая резистентность?

  3. Какие факторы неспецифической защиты действуют в полости рта?

  4. Какие факторы специфической резистентности действуют в полости рта?

  5. Какими структурами в ротовой полости представлена иммунная система?

  6. Перечислите гуморальные и клеточные факторы резистентности, действующие в слюне?

  7. Концентрация какого иммуноглобулина в полости рта наибольшая?

  8. Перечислите специфические и неспецифические клеточные факторы резистентности полости рта.

  9. Как проявляются реакции гиперчувсвительности в полости рта?


Список литературы

Обязательная:

  1. Борисов Л.Б. Медицинская микробиология, вирусология, иммунология. – М.: ООО «Медицинское информационное агентство», 2001. – 736 с.

  2. Коротяев А.И., Бабичев С.А. Медицинская микробиология, иммунология и вирусология: Учебник для мед. вузов. – СПб.: СпецЛит, 2002. – 591 с.

  3. Поздеев О.К. Медицинская микробиология / Под ред. В.И. Покровского. – М.: ГЭОТАР-Медиа, 2005. – 768 с.

Дополнительная:

  1. Ахременко Я.А. Микробиология полости рта: Учебное пособие для студентов стоматологических факультетов. – Якутск: Изд-во Якутского госуниверситета, 2008. – 107 с.

  2. Зеленова Е.Г., Заславская М.И., Салина Е.В., Рассанов СП. Микрофлора полости рта: норма и патология: Учебное пособие. Нижний Новгород: Издательство НГМА, 2004. - 158с.

  3. Микробиология, вирусология и иммунология: учеб. для студентов мед. вузов / под ред. В. Н. Царёва. — М.: Практическая медицина, 2009. — 581 с.: ил.

  4. Практикум лабораторных работ с иллюстрированными ситуационными заданиями по микробиологии, иммунологии и вирусологии / под ред. А.А. Воробьева, В.Н. Царева. – М.: ООО « Медицинское информационное агентство», 2008. – 320 с.: ил.


Занятие № 6.

МЕТОДЫ ИЗУЧЕНИЯ МИКРОФЛОРЫ ПОЛОСТИ РТА.
Цели: изучить методы микробиологической диагностики заболеваний полости рта; познакомиться с особенностями забора исследуемого материала из полости рта для проведения микробиологического исследования.

Знать: характеристику методов микробиологической диагностики, особенности забора исследуемого материала из полости рта.

Уметь: осуществлять посев по секторам исследуемого материала для подсчета количества микроорганизмов.
Обоснование темы: представители нормальной микрофлоры полости рта являются основной причиной большинства стоматологических заболеваний. Для изучения этиологии и патогенеза этих заболеваний, а также для контроля проводимого лечения и прогнозирования исхода болезни используют методы микробиологической диагностики.
Вопросы для самоподготовки:

  1. Особенности забора исследуемого материала из полости рта (ротовая жидкость, зубная бляшка, содержимое десневого желобка, пародонтального кармана, кариозной полости, корневых каналов и др.).

  2. Методы микробиологической диагностики заболеваний полости рта

  3. Условия транспортировки материала от больного анаэробной инфекцией.


ПЛАН

Программа:

  1. Характеристика методов микробиологической диагностики.

  2. Общие правила забора и транспортировки проб для бактериологического исследования.

  3. Способы взятия исследуемого материала из полости рта.

  4. Изучение количественного состава различных биотопов полости рта.


Демонстрация:

  1. Среды, используемые для культивирования микроорганизмов-резидентов полости рта.

  2. Оборудование, используемое для культивирования микроорганизмов.


Задание студентам:

  1. Осуществить посев по секторам ротовой жидкости и материала со спинки языка для подсчета количества микроорганизмов.

  2. Сравнить количество микроорганизмов из различных биотопов полости рта.


Информационный материал

Характеристика методов микробиологической диагностики

Выбор того или иного метода микробиологического исследования зависит от характера предполагаемого у больного патологического процесса, свойств возбудителя, места его максимальной концентрации и способов выделения из организма, а также интенсивности образования специфических антител против возбудителя в различные фазы заболевания.

В современной клинико-лабораторной службе для постановки микробиологического диагноза в распоряжении врача имеется 6 методов диагностики:

1. Микроскопический (бактериоскопический, вирусоскопический).

2. Бактериологический (вирусологический).

3. Серологический.

4. Аллергологический.

5. Биологический.

6. Молекулярно-биологический.

Микроскопические методы применяют для обнаружения бактерий, грибов и простейших в патологическом материале, взятом от больного, с помощью обработки специальными красителями (или в нативном препарате) под микроскопом. Ввиду того, что многие патогенные и условно-патогенные микроорганизмы, а также грибы и простейшие имеют внешнее сходство, микроскопические методы диагностики в чистом виде являются в большинстве случаев лишь ориентировочными и не дают основания для постановки окончательного диагноза.

Бактериологические методы включают в себя выделение чистой культуры возбудителя с последующей идентификацией его по морфологическим, тинкториальным, культуральным, биохимическим, антигенным и ряду других свойств. При этом возможно установить чувствительность выделенного агента к тем или иным химиотерапевтическим препаратам. Бактериологический метод является основным для постановки этиологического диагноза при большинстве инфекционных заболеваний, внутрибольничных инфекций, бактериальных осложнений.

Серологические методы основаны на обнаружении антител в сыворотке крови (серодиагностика) или антигенов в исследуемом материале (иммунохимический метод).

Ввиду того, что иммунитет при большинстве инфекционных болезней развивается только с 5-7 дня, а максимальное нарастание титра антител в сыворотке крови происходит лишь в периоде реконвалесценции, серологические методы менее пригодны для ранней диагностики и используются, главным образом, в целях ретроспективного распознавания этиологии уже перенесённого инфекционного процесса. Однако кровь для серологического исследования берётся обязательно в первые дни поступления (первые дни болезни), чтобы в дальнейшем иметь возможность наблюдения за нарастанием титра антител в динамике. Повторные серологические исследования при бактериальных инфекциях проводятся не раньше чем через 5-7 дней. При вирусных заболеваниях берутся «парные сыворотки» с интервалом 2 недели. Нарастание титра антител не менее, чем в 3-4 раза подтверждает диагноз заболевания.

Обнаружение антигенов в исследуемом материале (иммунохимический метод) позволяет достаточно быстро и точно поставить диагноз.

Аллергологический метод направлен на выявление повышенной чувствительности организма к специфическому аллергену, которым является возбудитель заболевания. В основе метода лежит феномен гиперчувствительности I и IV типов.

Биологический метод диагностики инфекционных заболеваний, основанный на заражении лабораторных животных, применяется в случаях, когда выделение возбудителя на питательных средах затруднено или невозможно в силу биологических особенностей микроорганизмов, либо, когда необходимо выявить факторы патогенности микроорганизмов (капсулы, токсин и т.д.).

Молекулярно-биологический метод диагностики (ПЦР, гибридизация ДНК и др.) основан на обнаружении и идентификации нуклеиновой кислоты возбудителя. Этот метод позволяет быстро и точно поставить диагноз даже при небольшом содержании возбудителя в исследуемом материале.

Общие правила забора и транспортировки проб для бактериологического исследования

При взятии и транспортировке материала для проведения микробиологического исследования необходимо соблюдать ряд общих правил:

1. Брать материал до начала антибактериальной терапии или через 10-12 часов после отмены препарата.

2. Брать материал непосредственно из очага инфекции или исследовать соответствующее отделяемое (гной из фистулы, мокроту при пневмонии, мазки с миндалин при ангине и т.д.).

3. Брать материал во время наибольшего содержания в нём возбудителей заболевания.

4. Соблюдать строжайшую асептику во избежание загрязнения пробы микрофлорой окружающей среды.

5. Материал для выделения аэробов и факультативных анаэробов берут стерильными ватными тампонами (отделяемое из раны, мазки со слизистых оболочек, из глаз, носа, зева), шприцем (кровь, гной, экссудат), непосредственно в стерильную посуду.

Материал для выделения строгих анаэробов получают из патологического очага путём пункции шприцем, из которого предварительно удаляют воздух; при исследовании кусочков тканей их берут из глубины очага и моментально погружают в транспортную среду. При необходимости использования тампонов, их сразу же после взятия материала также погружают в транспортную среду.

6. Количество материала должно быть достаточным для проведения исследования и для его повторения в случае необходимости.

7. Транспортировку нативного клинического образца в лабораторию следует производить в максимально короткие сроки (не позднее, чем через 2 часа от момента взятия пробы), т.к. это определяет эффективность микробиологического исследования.

При длительном хранении материала происходит гибель наиболее требовательных к питательным веществам видов микробов, начинают размножаться менее требовательные и быстро растущие виды, что приводит к нарушениям количественного соотношения видов, и дезориентирует врача-микробиолога при интерпретации полученных результатов. Всё же, если материал нельзя в ближайшие 2-3 часа транспортировать в лабораторию, хранить его следует в холодильнике, используя консервирующие или транспортные среды (кроме проб крови и ликвора).

8. Клинические образцы для культивирования строгих анаэробов следует транспортировать в лабораторию, максимально защищая их от воздействия кислорода воздуха. Используют специальные флаконы, заполненные газом, не содержащим кислорода. Уколом иглы через резиновую крышку, плотно завальцованную, во флакон вносят исследуемый материал. Материал можно транспортировать прямо в шприце, на кончик которого надета стерильная пробка.

Транспортировку материала осуществляют также в транспортных средах, например, в смеси 10% лизированной крови донора, 10% глицерина и 80% изотонического раствора хлорида натрия.

Недопустимо транспортировать пробирки, шприцы и флаконы с патологическим материалом, взятым от больного, прямо в руках. Всю посуду, содержащую материал для микробиологического исследования, транспортируют в специально предназначенных для этого биксах, пеналах и т.д.

9. К клиническому образцу, направляемому в лабораторию, прилагают сопроводительный документ, содержащий основные сведения, необходимые для проведения микробиологического исследования (характер материала, фамилия, имя и отчество больного, название учреждения или отделения, номер истории болезни, предполагаемый диагноз заболевания, предшествующая антимикробная терапия, дата и время взятия материала, фамилия врача, направляющего материал на исследование).

Способы взятия исследуемого материала из полости рта

Непосредственной причиной большей части заболеваний в полости рта являются резиденты (или их этиология вообще не выяснена) и поэтому предметом исследования в этих случаях является адаптированная к организму индигенная микрофлора, ее воздействие на организм и роль микробных ассоциаций в развитии оппортунистических болезней. Из этого своеобразия патологического процесса вытекают и особенности использования микробиологических методов.

1. Использование микробиологических методов при стоматологических заболеваниях (кариесе, пародонтите, афтозном стоматите и т.п.) направленно не на диагностику болезней, а на изучение этиологии и патогенеза этих заболеваний.

2. При одонтогенных воспалительных процессах (периодонтитах, абсцессах, флегмонах и т. п.) эти методы могут быть использованы для контроля проводимого лечения, прогнозирования исхода болезни.

3. Эти методы позволяют определить чувствительность микробной ассоциации к антибиотикам и, соответственно, выбрать рациональную терапию.

В стоматологии чаще всего используют бактериоскопический и бактериологический методы исследования. Идет разработка тест систем для диагностики возбудителей методом ПЦР.

При стоматологических заболеваниях в качестве исследуемого материала можно изучать:


  • зубную бляшку,

  • ротовую жидкость,

  • содержимое десневого желобка или патологического десневого кармана,

  • материал из кариозной полости,

  • материал из корневых каналов,

  • гранулемы,

  • гнойное отделяемое,

  • пунктаты,

  • соскобы,

  • мазки-отпечатки со слизистой оболочки или элементов поражения.

В практической стоматологии чаще исследуют:

  • мазки-отпечатки со слизистой оболочки,

  • гнойное отделяемое,

  • пунктаты.

Общие правила забора материала при стоматологических заболеваниях.

  1. При заборе материала из различных участков следует исключить попадание в пробу слюны. Для этого исследуемую область обкладывают стерильными ватными тампонами.

  2. Перед забором материала нельзя обрабатывать полость рта бактерицидными препаратами, а также необходимо выяснить у больного, не принимал ли он в течение последних 3 недель антибиотики.

  3. Учитывая, что большая часть резидентов полости рта является облигатными анаэробами, при заборе материала и его транспортировке необходимо соблюдать условия анаэробиоза.


Исследование зубной бляшки

Смотри тему: МИКРОБИОЛОГИЯ КАРИЕСА И ИССЛЕДОВАНИЕ МИКРОФЛОРЫ ПРИ КАРИЕСЕ



Исследование ротовой жидкости

Смотри тему: МИКРОБИОЛОГИЯ КАРИЕСА И ИССЛЕДОВАНИЕ МИКРОФЛОРЫ ПРИ КАРИЕСЕ



Исследование кариозной полости

Смотри тему: МИКРОБИОЛОГИЯ КАРИЕСА И ИССЛЕДОВАНИЕ МИКРОФЛОРЫ ПРИ КАРИЕСЕ



Исследование корневых каналов

Смотри тему: ГНОЙНО-ВОСПАЛИТЕЛЬНЫЕ ПРОЦЕССЫ ПОЛОСТИ РТА



Исследование десневой жидкости

Смотри тему: МИКРОБИОЛОГИЯ ЗАБОЛЕВАНИЙ ПАРОДОНТА



Исследование соскобов со слизистой оболочки

Смотри тему: ЗАБОЛЕВАНИЯ СЛИЗИСТОЙ ОБОЛОЧКИ ПОЛОСТИ РТА.

Для изучения орального микробиоценоза применяются следующие питательные среды: 5% кровяной агар для подсчета общего микробного обсеменения, желточно-солевой агар – для стафилококков, сахарный бульон и "Mitis Salivarius Agar” – для стрептококков, растительно-молочную среду для лактобактерий, среду Сабуро с полимексином - для грибов рода Candida, среду Вильсона-Блера для анаэробов, среду Эндо – для энтеробактерий.

Посевы инкубируются в термостате 24 часа, среда Сабуро около 5 дней.

Идентификация выделенных штаммов микроорганизмов осуществляют на основании морфологических, культуральных и биохимических признаков в соответствии с определителем бактерий Д. Берги (1988).

Количественный учет плотности популяций различных экологических групп производится путем подсчета колониеобразующих единиц (КОЕ) в одном грамме зубного налета, 1 мл ротовой жидкости, на 1 см2 поверхности языка и слизистых оболочек щеки, десны и неба.


Методические указания

Изучение количественного состава различных биотопов полости рта

Количественный учет плотности популяций различных экологических групп производится путем подсчета колониеобразующих единиц (КОЕ) при посеве на питательные среды.



Ход работы.

1. Забор материала со слизистых оболочек и поверхности языка для бактериологического метода проводится стерильным ватным тампоном с площади 1 см2 и последующим высевом на питательные среды.

Ротовая жидкость собирается в стерильную пробирку, для посева исследуется 1 мл.

2. Исследуемый материал тщательно растирают петлей в секторе А. После чего петлю прожигают и из "грязного" сектора А выполняют 4 линейных штриха во 1 сектор, затем также во 2 и 3.



Схема посева.


3. Посев инкубируют в термостате при 37°С в течении 12-18 часов.

4. Подсчитать количество колоний в 3-ем (последнем) секторе.

Общее количество жизнеспособных бактерий в 1 мл материала (КОЕ/мл, колониеобразующие единицы) вычислить, пользуясь формулой:

N = n х 106 ,

где N — общее число бактерий, n — число колоний в секторе.

5. Сравнить количество микроорганизмов из различных биотопов полости рта.
Контрольные вопросы


  1. Какие методы микробиологической лабораторной диагностики Вы знаете?

  2. Какие существуют особенности использования методов микробиологической диагностики в стоматологии?

  3. Как осуществляют забор материала из кариозной полости?

  4. Как забирают материал из десневого кармана?

  5. Какой исследуемый материал чаще всего используют в стоматологии?

  6. Как осуществляют количественный учет плотности популяций различных экологических групп?


Список литературы

Обязательная:

  1. Борисов Л.Б. Медицинская микробиология, вирусология, иммунология. – М.: ООО «Медицинское информационное агентство», 2001. – 736 с.

  2. Коротяев А.И., Бабичев С.А. Медицинская микробиология, иммунология и вирусология: Учебник для мед. вузов. – СПб.: СпецЛит, 2002. – 591 с.

  3. Поздеев О.К. Медицинская микробиология / Под ред. В.И. Покровского. – М.: ГЭОТАР-Медиа, 2005. – 768 с.

Дополнительная:

  1. Ахременко Я.А. Микробиология полости рта: Учебное пособие для студентов стоматологических факультетов. – Якутск: Изд-во Якутского госуниверситета, 2008. – 107 с.

  2. Зеленова Е.Г., Заславская М.И., Салина Е.В., Рассанов СП. Микрофлора полости рта: норма и патология: Учебное пособие. Нижний Новгород: Издательство НГМА, 2004. - 158с.

  3. Микробиология, вирусология и иммунология: учеб. для студентов мед. вузов / под ред. В. Н. Царёва. — М.: Практическая медицина, 2009. — 581 с.: ил.

  4. Практикум лабораторных работ с иллюстрированными ситуационными заданиями по микробиологии, иммунологии и вирусологии / под ред. А.А. Воробьева, В.Н. Царева. – М.: ООО « Медицинское информационное агентство», 2008. – 320 с.: ил.


Занятие № 7.

ЗАБОЛЕВАНИЯ СЛИЗИСТОЙ ОБОЛОЧКИ ПОЛОСТИ РТА.
Цели: изучить возбудителей бактериальных, вирусных, грибковых стоматитов.
Знать: классификацию заболеваний слизистой полости рта, характеристику основных возбудителей бактериальных, вирусных и грибковых стоматитов.

Уметь: идентифицировать грибы рода Candida по культуральным, морфологическим и тинкториальным свойствам.
Обоснование темы: поражения слизистой оболочки полости рта могут вызывать различные инфекционные агенты.
Вопросы для самоподготовки:

1. Заболевания слизистой оболочки полости рта бактериальной природы. Этиология. Патогенез. Лечение. Профилактика.

2. Вирусные стоматиты. Этиология. Патогенез. Лечение. Профилактика.

3. Заболевания слизистой оболочки полости рта грибковой природы. Этиология. Патогенез. Лечение. Профилактика.


ПЛАН

Программа:

1 Классификация стоматитов.

2. Острые бактериальные инфекции.

3. Хронические бактериальные инфекции.

4. Вирусные стоматиты.

5. Грибковые инфекции полости рта.

6. Микробиологическая диагностика стоматитов.
Демонстрация:


  1. Фотографии, характеризующие клинические проявления стоматитов различной этиологии.

  2. Рост Candida albicans на сахарном агаре.

  3. Готовые мазки из чистой культуры Candida albicans.


Задание студентам:

1. Заполнить таблицу: «Характеристика возбудителей бактериальных стоматитов».



Заболевание

Гнойно-воспалительные процессы

Скар-латина

Гонококковый стоматит

Язвенно-некротический стоматит

Диф-терия

Тубер-кулез

Сифилис

Возбудитель






















Окраска по Граму






















Морфология






















Устойчивость во внешней среде






















Отношение к кислороду






















Патогенез






















Лечение






















Препараты для профилактики






















2. Изучить культуральные, морфологические и тинкториальные свойства грибов рода Candida.
Информационный материал

Классификация стоматитов

Стоматитом называется заболевания слизистой оболочки полости рта различного происхождения, характеризующиеся воспалением.

Инфекции, поражающие слизистую оболочку рта и красную кайму губ, можно разделить на две группы: первичные и вторичные. К первичным относят такие заболевания, при которых входными воротами инфекции является слизистая оболочка рта и красная кайма губ, где развивается инфекционный процесс. При вторичных инфекциях слизистая оболочка является местом проявления общих, системных заболеваний человека - кишечных, респираторных и других.

Инфекционные заболевания слизистой оболочки рта в зависимости от инфекционного агента можно разделить на бактериальные, вирусные и грибковые.

Кроме того, стоматиты можно разделить на экзогенные (инфекционные) и эндогенные (оппортунистические).



Острые бактериальные инфекции

Гнойно-воспалительные процессы (фурункулы, гингивостоматит, заеда, хронические трещины губ, хроническая язвенная пиогенная гранулема) могут вызывать различные стафилококки (чаще S. aureus) и стрептококки (зеленящие стрептококки, S. pyogenes). Микроорганизмы являются грамположительными кокками, в мазке располагаются в виде скоплений (стафилококки) или цепочек (стрептококки). Спор и жгутиков не имеют. Факультативные анаэробы. Устойчивы во внешней среде.

При всех выше перечисленных формах гнойно-воспалительных процессов появляются эрозии с гнойным отделяемым. Входными воротами для гноеродных кокков могут служить микротравмы. Смешанная стафило- и стрептококковая флора является причиной развития импетиго, при котором вначале обнаруживаются стрептококки, а затем - стафилококки. При этом гнойничковый процесс развивается на коже лица, красной кайме губ и далее может распространиться на слизистую оболочку рта. Заболевание чаще встречается у детей, а также пожилых людей, пользующихся съемными протезами.

Лечение проводят антибактериальными химиопрепаратами. Специфическая профилактика отсутствует. Для диагностики кокковых пиодермий и нагноений слизистой оболочки полости рта используют бактериологический метод.

Скарлатина. Возбудителем скарлатины является Streptococcus pyogenes. Представлен грамположительными кокками, расположенными в виде цепочки или попарно. На кровяном агаре дает бета-гемолиз, факультативные анаэроб. Основной фактор патогенности - эритрогенный токсин.

Инфекция передается воздушно-капельным путем. У больного скарлатиной наблюдается яркая гиперемия слизистой оболочки миндалин и нёба («пылающий зев»). Язык покрыт белым налётом и на этом фоне выделяются грибовидные сосочки ярко-красного цвета. В тяжелых случаях могут быть изъязвления. На 2-3 день болезни на коже появляется ярко-розовая или красная мелкоточечная сыпь. Через 10 дней изменения в полости рта проходят. Заболевания чаще встречается у детей дошкольного возраста.

Лечение проводят антибактериальными химиопрепаратами. Специфическая профилактика отсутствует. Диагноз обычно ставят на основании клинических данных.

Гонококковый стоматит вызывается гонококками (Neisseria gonorrhoeae) – грамотрицательные диплококки. Жгутиков не имеют, спор не образуют. Аэробы. Неустойчивы во внешней среде.

Гонококковый стоматит передается контактно-половым и контактно-бытовым путями, а также при прохождении ребенка через родовые пути инфицированной матери. Заболевание проявляется гиперемией, отеком на слизистой оболочке рта, небольшими эрозиями с вязким слизисто-гнойным секретом. На губах при гонорее могут быть язвенные поражения, десны отечны и воспалены. Язык, слизистая оболочка щёк могут быть гиперемированы и с изъявлениями. Возможно также поражение слюнных желез и глотки.

Лечение проводят антибактериальными химиопрепаратами. Специфическая профилактика отсутствует. Для диагностики применяют бактериоскопический, бактериологический и молекулярно-биологический (ПЦР) методы.

Гингивостоматит Симановского-Плаута-Венсана (фузоспирохетоз) относят к оппортунистическим инфекциям полости рта. Это микст-инфекция, вызываемая двумя обитателями полости рта - Treponema vincentii и Fusobacterium nucleatum.

Местные проявления наблюдаются при снижении естественной резистентности организма. Болезнь возникает при ослаблении защитных сил организма человека (переохлаждение, различные стрессовые состояния, гиповитаминозы, недостаточность секреции slgA на слизистой рта). Заболевание чаще возникает у молодых людей, а также у истощенных лиц на фоне курения, хронического алкоголизма и хронических заболеваний. Но также может развиться как осложнение гингивита или кариеса.

Существует мнение, что фузоспирохетоз возникает на фоне первоначального воспалительного процесса, вызванного банальной кокковой флорой. Затем происходит активное размножение фузиформных бактерий и спирохет, которые постоянно присутствуют в небольших количествах в складках слизистой оболочки и десневых карманах полости рта. Патогенетическое значение фузобактерий связано с наличием у них фермента коллагеназы, который участвует в разрушении коллагеновых волокон соединительной ткани. При этом азотсодержащие низкомолекулярные продукты, образовавшиеся в результате распада коллагена, могут усваиваться спирохетами. Анаэробные условия, создающиеся в некротизированных тканях, препятствуют быстрому выздоровлению и способствуют дальнейшему повреждению тканей размножившимися анаэробами (бактероидами, пептококками и пептострептококками). Клиническая картина характеризуется образованием плёнчато-язвенных поражений на миндалинах, слизистой оболочке щёк, дёсен, глотки.

Лечение проводят антибактериальными химиопрепаратами, направленными, прежде всего, против микроорганизмов, вызвавших первичные поражения (стафилококки, стрептококки). Специфическая профилактика отсутствует. Диагностика проводится при помощи бактериоскопического исследования.



Дифтерия. Возбудителями являются токсигенные штаммы Corynebacterium diphtheriae. Грамположительные палочки с утолщениями на концах, расположенные в виде латинских бук L, Y, V. Неподвижны, спор не образуют. Аэробы. В окружающей среде сохраняют жизнеспособность в течение нескольких дней.

Заражение происходит воздушно-капельным путем. При островчатой форме дифтерии на миндалинах, нёбных дужках, язычке, иногда на месте прорезывающе­гося или удалённого зуба и на слизистой оболочке щек образуются плотно сидящие налёты в виде небольших бляшек или точек белого либо серовато-белого цвета. При распространенной форме дифтерии ротоглотки на фоне неяркой гиперемии отмечаются характерные плёнчатые налёты, цвет которых становится грязно-серым или желто­вато-серым. Симптомы интоксикации могут быть слабо выражены, и больной переносит заболевание «на ногах». Довольно часто встреча­ются атипичные формы дифтерии, протекающие под видом катараль­ной, фолликулярной или лакунарной ангины, дифтерия носа и ране­вых поверхностей, нередко встречается и т.н. «здоровое» носительство токсигенных штаммов.

Лечение проводят антитоксической сывороткой и антибактериальными химиопрепаратами. Специфическая профилактика – адсорбированная коклюшно-дифтерийно-столбнячная вакцина (содержит дифтерийный анатоксин). Диагностику дифтерии проводят при помощи бактерио­логического и бактериоскопического методов.

Хронические бактериальные инфекции

Сифилис. Возбудителем является бледная трепонема (Treponema pallidum). Микроорганизм представляет собой тонкую спираль, состоящую из 8-12 завитков. Грамотрицательный. Подвижен, спор не образует. Анаэроб или микроаэрофил. Во внешней среде не устойчив.

Передается контактно-половым, контактно-бытовым, а также трансплацентарным путями.

Заболевание характеризуется хроническим течением и стадийностью. Формирование первичной сифиломы - твердого шанкра - наблюдается по истечении 3-4-недельного инкуба­ционного периода. Шанкр может находиться на красной кайме губ, слизистой оболочке рта, языке, миндалинах (шанкр-амигдалит). Шан­кры полости рта составляют 55% от всех экстрагенитальных локали­заций.

Вторичный период характеризуется полиморфной сыпью (розеолезной, папулезной, пустулезной) на коже и слизистых оболочках. На слизистой оболочке полости рта сифили­тические папулы располагаются на щеках по линии смыкания зубов, на твердом нёбе, на миндалинах в виде плотных элементов со слегка белесоватой гладкой поверхностью. Папулы могут сливаться в сплошные эрозивные бляшки с сероватым налётом, безболезненные. Нередко аналогичные высыпания имеют место на гортани, и у боль­ного отмечается охриплость голоса. Изъязвления могут также нахо­диться в области мягкого нёба, миндалин и напоминать афты, сопро­вождаясь болезненностью и повышением температуры.

Третичный сифилис в полости рта проявляется бугорковым или гуммозным сифилисом. Бугорковый сифилис может локализоваться в полости рта, на губах и проявляется в виде синюшно-красных плотных безболезненных бугорков. Сифилитические гуммы в полости рта могут быть одиночными и множественными. Без лечения развивается гуммозная перфорация твердого и мягкого неба.

При врожденном сифилисе первые симптомы проявляются уже на 1-2 месяце жизни. Губы становятся отечными, утолщенными, желто-красного цвета, на поверхности пораженной слизистой оболочке рта появляются язвы, которые в дальнейшем рубцуются. Особенно характерны рубцы в углах рта (рубцы Робинсона-Фурнье).

Для позднего врожденного сифилиса (после 2 лет) характерна триада Хатчинсона: паренхиматозный кератит (помутнение рогови­цы), лабиринтная глухота и хатчинсоновские зубы (бочкообразная или долотообразная форма резцов, гипоплазия жевательной поверхности с полулунной выемкой по свободному краю). Возможны и другие дис­трофии зубов: зуб Муна (недоразвитие жевательных бугорков первых моляров), щучий зуб Фурнье (изменение клыка с истончением его свободного конца), бутонообразные зубы и др.

Лечение проводят антибактериальными химиопрепаратами. Специфическая профилактика отсутствует. Для микробиологической диагностики используют бактериоскопический и серологический методы.



Туберкулез. Возбудителем туберкулеза человека являются Mycobacterium tuberculosis и M. bovis. Грамположительные палочки. Неподвижны, спор не образуют. Аэробы. Устойчивы во внешней среде.

Основной механизм заражения — аэрогенный (воздушно-капельный, воздушно-пылевой), реже — алиментарный и контактный. Тубер­кулёзные поражения полости рта представляют собой проявления об­щего заболевания. Наиболее часто возбудители попадают в ротовую полость гематогенным путем, и заболевание проявляется в виде туберкулёзной волчанки. Процесс чаще всего локализуется на десне и в области передних зубов на верхней губе и на небе. Заболевание начинается с появления красного бугорка 1-3 мм, который в центре разрушается с образованием язвы. При дальнейшем развитии заболе­вания разрушается костная ткань межальвеолярных перегородок, что приводит к подвижности и выпадению зубов. При длительном тече­нии болезни на месте поражения образуются гладкие, блестящие руб­цы. Осложнение заболевания бактериальной или кандидозной вторич­ной инфекцией отягчает процесс.

Лечение проводят противотуберкулезными химиопрепаратами. Для специфической профилактики применяется живая вакцина БЦЖ. Диагностику проводят на основании бактериоскопического, бактериологического, биологического, молекулярно-биологического и аллергологического методов.

Актиномикоз.

Актиномицеты имеют вид грамположительных ветвящихся микроорганизмов с тенденцией к фрагментации. Неподвижны. Облигатные или факультативные анаэробы.

Патологическое значение для человека наиболее часто представляют Actinomyces israelii и А. viscosus. Существуют два мнения по поводу источника инфекции:

1. Актиномикоз — это эндогенная инфекция, возникающая при снижении естественной резистентности макроорганизма (особенно при снижении активности защитных факторов на слизистых оболочках).

2. Источником инфицирования людей могут быть актиномицеты, вегетирующие на злаках, в почве и попадающие в организм экзогенным путем (при травмировании слизистых оболочек соломой, травой и т.д.).

В настоящее время четко установлено, что потенциально патогенные актиномицеты A. israelii, как правило, обитают на слизистой полости рта, поэтому эндогенное заражение превалирует над экзогенным. Актиномикоз никогда не передается от человека к человеку.

Актиномицеты всегда присутствуют в полости рта в небольшом количестве, но при воспалительных процессах отмечается их увеличение. В полости рта имеются излюбленные места проникновения актиномицетов в глубину тканей — воспаленная десна возле зуба мудрости или около разрушенных корней зубов, патологические десневые карманы при пародонтите.

Различают отдельные клинические формы актиномикоза, среди которых сравнительно часто встречается актиномикоз лица и нижней челюсти. Для актиномикоза характерно разрастание грануляционной ткани вокруг микробного очага. Образуются гранулемы в мягких тканях и челюстных костях, которые достигают больших размеров. Центральная часть гранулемы некротизируется и гной выделяется через свищи.

В гное обнаруживаются характерные морфологиче­ские гранулёмы, называемые друзами. Они имеют вид желтоватых зернышек и являются результатом развития местных реакций гипер­чувствительности (ГЗТ). При микроскопическом исследовании в цен­тре друзы видны сплетения тонких гиф с радиально расходящимися в виде лучей мицелиальными нитями с колбовидными утолщениями на концах (способствуют распространению актиномицетов), окруженных эозинофильными скоплениями. Данная форма (друза) имеет защитное значение для актиномицетов — она предохраняет от фагоцитоза и антител в макроорганизме.

В ходе заболевания, как правило, присоединяется вторичная гнойная инфекция, вследствие проникновения из полости рта в очаг поражения различных гноеродных микроорганизмов.

При актиномикозе проводят комплексное лечение: хирургическое (вскрытие актиномикозных очагов), противовомикробное, создание специфического иммунитета (введение актинолизата) и повышение общей реактивности организма. Специфическая профилактика отсутствует. Диагностику проводят на основании бактериоскопического и аллергологического методов.

Вирусные инфекции полости рта

Поражения слизистой оболочки рта наблюдается при многих вирусных инфекциях.



Герпетический гингивостоматит вызывает вирус простого герпеса 1 типа (Symplexvirus). Этот вирус также вызывает герпетическую лихорадку, герпетическую экзему, кератоконъюнктивит, менингоэнцефалит и некоторые другие заболевания.

Острым герпетическим гингивостоматитом болеют чаще всего дети от 6 мес до 6 лет. Первичное инфицирование вирусом происхо­дит как раз в этом возрасте при контакте со взрослыми вирусоносителями. Заболевание протекает как в форме острой инфекции, так и ак­тивации латентного носительства.

Гингивостоматит при герпесной инфекции протекает с повыше­нием температуры, сильными болями во рту, слюнотечением. Сначала появляется гиперемия, затем формируются везикулы, которые быстро переходят в афты. Клинически это выглядит как эрозия, овальной или щелевидной формы с ровными краями, гладким дном, покрытым се­ровато-беловатым налётом. Локализуются афты чаще на слизистой оболочке нёба, языка, губ, переходных складок. Некротизированные участки десны имеют желтовато-белый цвет, не снимающийся при протирании. Присоединение кокковой инфекции утяжеляет течение заболевания.

Лечебные мероприятия направлены на профилактику вторичного бактериального инфицирования очагов поражения. Также назначают мази и кремы на основе ацикловира (противовирусное действие). Для специфической профилактики разработаны инактивированные вакцины, многократная иммунизация которыми снижает частоту рецидивов герпетической инфекции. Для диагностики используют вирусоскопический, вирусологический, биологический и серологический методы.



Герпетическая ангина. Возбудитель - вирус Коксаки А (семейство пикорнавирусы). Данное заболевание проявляется везикулярными высыпаниями на фоне общей гиперемии слизистой оболочки рта. Пузырьки быстро лопаются, и на их месте образуются афты с серовато-белым дном. Процесс протекает обычно благоприятно и заканчивается выздоровлением к концу 1-й недели заболевания.

Проводят симптоматическую терапию, так как эффективные антивирусные препараты и средства специфической профилактики отсутствуют. Основа микробиологической диагностики – вирусологические и биологические методы.



Грибковые инфекции полости рта

Возбудителями большинства микозов, поражающих слизистую оболочку полости рта, являются дрожжеподобные грибы рода Candida, вызывающие кандидоз. Наиболее патогенным из всех видов грибов рода Candida (а их на­считывается около 150) является С. albicans.

Как и другие грибы кандиды являются эукариотами. Они могут существовать в виде дрожжей, гиф (несептированный мицелий) и псевдогиф (псевдомицелий) — тонких удлиненных клеток, располагающихся друг за другом в виде нитей и не имеющих общей оболочки. По типу дыхания кандиды являются аэробами. Микроорганизмы достаточно устойчивы во внешней среде. Они лучше выживают на влажных поверхностях, чем на сухих неживых объектах, но при достаточной степени загрязнения могут сохраняться на последних до 24 часов.

Если говорить о путях инфицирования, то наиболее часто встречается эндогенное развитие кандидоза, обусловленное носительством грибов. В норме допускается небольшое содержание этих грибов в полости рта, а также на протяжении всего ЖКТ, в половых путях (особенно у женщин) и на поверхности кожи. При снижении резистентности слизистых оболочек (недостаточности не­специфических и специфических защитных факторов, а также антаго­нистического действия индигенной микрофлоры) количество дрожжеподобных грибов начинает нарастать. Также возможно экзогенное инфицирование (особенно в клинических стационарах). Но развитие заболевания происходит только на фоне иммунодефицитных состояний, обусловленных возрастными особенностями, длительной антибактериальной терапией, применением кортикостероидов, химиотерапией при онкозаболеваниях, ВИЧ-инфекцией и т.д.

Классификация кандидозов слизистой оболочки полости рта (А.М. Ариевич, 1965).

По клиническому течению различают:

1. Острый кандидоз:

Псевдомембранозный (молочница);

Атрофический.

2. Хронический кандидоз:

Гиперпластический;

Атрофический.

По степени поражения: поверхностный и глубокий.

По распространенности: генерализованный и очаговый.

Местное проявление кандидоза, или первичный кандидоз в по­лости рта, протекает в форме острого псевдомембранозного кандидо­за (молочницы). При этом полость рта покрывается белым налетом и имеет вид свернутого молока. Заболевание часто встречается у ново­рожденных, особенно недоношенных и с родовыми травмами, а также детей, находящихся на искусственном вскармливании. У взрослых псевдомембранозный кандидоз встречается редко и поражает главным образом лиц с тяжелыми вторичными иммунодефицитными состоя­ниями - при онкозаболеваниях, после применения стероидных гормо­нов, цитостатиков, на фоне лучевой терапии.

Как следствие острого псевдомембранозного кандидоза может развиваться острый атрофический кандидоз. Характеризуется болезненностью, жжением, сухостью в полости рта. Слизистая оболочка полости рта огненно-красная, сухая. При локализации на языке его спинка становится малиново-краснoгo цвета, сухая, блестящая, нитевидные сосочки атрофированы. Налет отсутствует или сохраняется в глубоких складках, снимается с трудом, представляет собой конгломерат слущенного эпителия и большого количества грибов рода Candida в стадии активного почкования (мицелия, псевдомицелия).



Хронический атрофический кандидоз развивается часто в резуль­тате ношения протезов. Поражаются, в основном, изолированные уча­стки губ (кандидозный хейлит), углов рта (заеды), языка (глоссит).

Гиперплатический кандидоз характеризуется появлением на гиперемированной слизистой оболочке крупных, иногда сливающихся белых папул. Поражаются, главным образом, слизистая оболочка щёк рядом с углами губ, спинка языка и задняя часть нёба. Заболевание приобретает хроническое течение и может рассматриваться как предраковое заболевание.

Диагностику проводят с использованием микроскопического, микологического, серологического и аллергологического исследований



Микробиологическая диагностика стоматитов

При стоматитах полости рта в качестве исследуемого материала берут налет со слизистой оболочки, языка; материал (гной, экссудат) из эрозий, язв и других элементов поражения, а также кровь.

Основными методами диагностики являются микроскопический (бактериоскопический, вирусоскопический) и бактериологический (вирусологический). Кроме того, используют серологический, биологический, молекулярно-генетический и аллергологический методы.

Соскоб со слизистой оболочки, спинки языка можно делать стерильным шпателем, гладилкой. Перед взятием материала из эрозий, язв необходимо удалить поверхностный налет сухим или смоченным изотоническим раствором тампоном, не применяя антисептических препаратов. Этот материал может быть использован для микроскопического и бактериологического методов исследования.

В некоторых случаях можно делать мазки-отпечатки со слизистой оболочки или элементов поражения. Для этого сухое обезжиренное стекло с зашлифованными краями прикладывают несколько раз к исследуемому участку. Если имеются труднодоступные места, то можно для забора материала использовать стерильные резиновые столбики, приготовленные из ластиковой резинки, которые прикладывают сначала к пораженному участку, а затем к стеклу.

Забор материала со слизистых оболочек и поверхности языка для бактериологического метода проводится стерильным ватным тампоном с площади 1 см2 и последующим высевом на питательные среды.
Методические указания

Изучение культуральных свойств грибов рода Candida.


  1. Зарисовать колонии на питательной среде.

  2. Описать культуральные свойства.

Культуральные свойства микроорганизма описывают по следующему плану: форма колонии, размер, цвет, характер края, центра, консистенция.

На сахарном агаре грибы рода Candida образуют белые круглые творожистые колонии.



Изучение морфологических и тинкториальных свойств грибов рода Candida

  1. Приготовить фиксированный мазок из чистой культуры микроорганизма.

  2. Окрасить по Граму.

  3. Микроскопировать и зарисовать.

В мазке из чистой культуры грибы рода Candida представляют собой округлые крупные клетки, окрашенные грамположительно.
Контрольные вопросы

  1. Что такое стоматиты?

  2. Какие возбудители вызывают острые бактериальные инфекции полости рта?

  3. Как можно классифицировать инфекции полости рта?

  4. Какие из рассматриваемых инфекций можно отнести к оппортунистическим?

  5. Опишите наиболее распространенные вирусные заболевания, проявляющиеся в ротовой полости.

  6. Охарактеризуйте микозы полости рта.

  7. Какие условия является предрасполагающими для развития кандидозов?

Список литературы

Обязательная:

  1. Борисов Л.Б. Медицинская микробиология, вирусология, иммунология. – М.: ООО «Медицинское информационное агентство», 2001. – 736 с.

  2. Коротяев А.И., Бабичев С.А. Медицинская микробиология, иммунология и вирусология: Учебник для мед. вузов. – СПб.: СпецЛит, 2002. – 591 с.

  3. Поздеев О.К. Медицинская микробиология / Под ред. В.И. Покровского. – М.: ГЭОТАР-Медиа, 2005. – 768 с.

Дополнительная:

  1. Ахременко Я.А. Микробиология полости рта: Учебное пособие для студентов стоматологических факультетов. – Якутск: Изд-во Якутского госуниверситета, 2008. – 107 с.

  2. Зеленова Е.Г., Заславская М.И., Салина Е.В., Рассанов СП. Микрофлора полости рта: норма и патология: Учебное пособие. Нижний Новгород: Издательство НГМА, 2004. - 158с.

  3. Микробиология, вирусология и иммунология: учеб. для студентов мед. вузов / под ред. В. Н. Царёва. — М.: Практическая медицина, 2009. — 581 с.: ил.

  4. Практикум лабораторных работ с иллюстрированными ситуационными заданиями по микробиологии, иммунологии и вирусологии / под ред. А.А. Воробьева, В.Н. Царева. – М.: ООО « Медицинское информационное агентство», 2008. – 320 с.: ил.



Занятие № 8.

ПРИНЦИПЫ АСЕПТИКИ В СТОМАТОЛОГИИ
Цели: познакомиться с современными методами стерилизации и дезинфекции в стоматологии; изучить современную систематику инструментов в зависимости от степени загрязнения.

Знать: методы дезинфекции и стерилизации, систематику инструментов в зависимости от степени загрязнения.

Уметь: выбирать метод обработки инструмента в зависимости от его характеристик и степени загрязненности.
Обоснование темы: любое стоматологическое вмешательство производится на инфицированных тканях, поэтому в стоматологии необходимо строгое соблюдение правил асептики и антисептики.
Вопросы для самоподготовки:

1. Необходимость асептики и антисептики в стоматологии.

2. Современные методы физической и химической дезинфекции и стерилизации. Антисептические препараты.

3. Профилактика инфицирования предметов и окружающих лиц через кровь и слюну.

4. Систематизация инструментов, материалов и оборудования стоматологических кабинетов в зависимости от характера и степени загрязнения (контаминации). Пути деконтаминации.
ПЛАН

Программа:


  1. Асептика в стоматологии.

  2. Методы дезинфекции и стерилизации.

  3. Особенности организации работы с ВИЧ-инфицированными пациентами.

  4. Систематизация приборов, процессов обработки и средств для дезинфекции и стерилизации в стоматологии.


Демонстрация:

  1. Оборудование, применяемое для стерилизации.

  2. Дезинфектанты, используемые в стоматологии.


Задание студентам:

Заполнить таблицу: «Характеристика методов стерилизации в стоматологии».



Метод

Аппарат

Режим

Объекты стерилизации

1. Паром под давлением










2. Газовая стерилизация










3. Химическая стерилизация










4. Ультразвуком










5. УФ и гамма-лучами










6. Плазмой











Информационный материал

Асептика в стоматологии.

Асептика – это система профилактических мероприятий, направленных на предотвращение микроорганизма в рану, лекарственные препараты и другие объекты. Она включает: стерилизацию инструментов, материалов; антисептическую обработку рук персонала; соблюдение определенных правил и премов работы (защитная одежда, маска и т.д.); осуществление специальных санитарно-противоэпидемических мероприятий (вентиляция, влажная уборка помещений и т.д.).

В стоматологии больше, чем в других областях медицины, необходимо строгое соблюдение правил асептики и антисептики, так как любое стоматологическое вмешательство производится на инфицированных тканях. Не только удаление кариозного зуба или обработка корневого канала, но и простой осмотр полости рта больного связаны с инфицированием используемых для этих целей инструментов. Чтобы исключить перенос микробов от одного больного в полость рта другого, а также предотвратить инфицирование здоровых тканей, допустима работа только стерильным инструментом. Обеспечение стерильным перевязочным материалом и инструментом — задача медицинской сестры, которую врач должен контролировать.

I. Обработка помещения стоматологического кабинета

1. Следить в кабинете за температурой и влажностью, использовать воздушные фильтры.

2. Перед приемом больных необходимо провести влажную уборку с использованием различных дезинфицирующих средств. Протирать 2 раза салфеткой с интервалом в 15 минут дезинфицирующими растворами (3% хлорамина, 6% перекиси водорода, 70% спиртом и др.) поверхности всех предметов с целью уничтожения вегетативных форм бактерий.

3. Затем необходимо включить ультрафиолетовую установку для уничтожения находящихся в воздухе и на поверхности бактерий. (Расчет бактерицидной лампы в 2,5 Вт на 1 куб.м в течение 1 часа).



II. Дезинфекция, стерилизация в стоматологическом кабинете

1. Дезинфекция – это комплекс мероприятий, направленных на уничтожение на объектах вегетативных форм возбудителей.

Дезинфекции должно подвергаться все оборудование, не имеющее контакта с раневой поверхностью или кровью (используются растворы 6% перекиси водорода, 3% хлорамина,70% спирта и др.)

2. Стерилизация — это комплекс мероприятий, направленных на уничтожение вегетативных и споровых форм патогенных и непатогенных микроорганизмов на изделиях медицинского назначения. Стерилизации должны подвергаться все предметы, соприкасающиеся с раневой поверхностью, контактирующие с кровью, и отдельные виды медицинских инструментов, которые в процессе работы соприкасаются со слизистой оболочкой и могут вызвать ее повреждение.

3. Перед стерилизацией необходимо провести предстерилизационную очистку. Для этого необходимо замочить в моющем растворе на 40-50 минут весь инструмент, боры, а затем очистить их от белковых, жировых, механических загрязнений и лекарственных препаратов. Очистка должна производится струйным, ротационным методами, ершеванием или с применением ультразвуковых ванночек, в которые помещают 6% раствор перекиси водорода и моющее вещество (порошок «Лотос», «Прогресс» и др.)

4. Методы и средства стерилизации:

физический;

химический (газовые стерилизаторы, растворы химических веществ);

радиационный (установки с радиоактивным источником излучения для промышленной стерилизации изделий однократного применения, стерилизующим агентом является γ- и β-излучение).

Лечебное учреждение вправе выбирать средства и методы стерилизации, наиболее подходящие к условиям конкретного медицинского учреждения.

Физический метод стерилизации включает действие высоких температур (паром, сухим жаром, гласперленовая стерилизация), ионизирующего излучения.

5. Стерилизация паровым методом. Стерилизацию паром под давлением осуществляют в паровых стерилизаторах-автоклавах.

Основной режим (время — 20 мин, давление пара — 2 кгс/см2, температура — 132°С) используется для стерилизации белья, перевязочного материала, изделий из коррозийного металла.

Щадящий режим (время — 45 мин, давление пара — 1,1 кгс/см2, температура — 120°С) применяется для стерилизации резиновых перчаток, изделий из латекса и отдельных полимерных материалов.

Режим стерилизации позволяет уничтожить не только бактерии, споры, но и такие вирусы, как вирус гепатита В (сывороточный гепатит) и ВИЧ. Стерилизацию проводят в стерилизационных коробках, биксах, мешках из влагопрочной бумаги с маркировкой. Этот метод рекомендуется для изделий из коррозиостойкого металла, стеклянных шприцев, резины, текстильных материалов, некоторых полимеров.

6. Стерилизация в среде нагретых до высокой температуры мелких стеклянных шариков (гласперленовый стерилизатор). Время стерилизации — от 20 секунд до 3 мин. Температура — 240°С. Стерилизации подвергается мелкий инструментарий.

7. Стерилизация сухим жаром в сухожаровых печах проводится при температуре 180°С в течение 150 минут (2,5 часа). Длительность воздействия также позволяет уничтожить вирусы гепатита В и ВИЧ. Стерилизации подвергают сухие изделия в упаковке из бумаги (срок хранения 20 дней). Стерилизовать можно и без упаковки, но тогда изделия должны быть использованы непосредственно после стерилизации.

8. Стерилизация химическим методом. Химическая (холодная) стерилизация осуществляется химическими веществами в виде растворов и газов. Изделия погружаются в раствор 6% перекиси водорода на 6 часов или в камеру с парами 40% формальдегида в этиловом спирте на несколько часов, что зависит от стерилизуемого материала.

9. В последнее время, в связи с появлением новой аппаратуры, стал более широко применяться газовый метод стерилизации. Он осуществляется в специальных камерах или настольных газовых стерилизаторах, где находится окись этилена или смесь этилена с бромистым метилом. Стерилизация идет при температуре от 35°С до 42°С в течение нескольких часов или дней в специальных пакетах с маркировкой:

а. если контакт с кровью, тканями был меньше 30 мин., то металлические изделия стерилизуют в течение 4-х часов, изделия из резины, пластмасс — 24 часа.

б. если контакт с кровью, тканями был больше 30 мин., то металлические изделия стерилизуют в течение 24 часов, изделия из резины, пластмасс — одну неделю, аппарат легкие-сердце-почка в течение 2-х недель. Такая длительная стерилизация связана с профилактикой ВИЧ и гепатита Б.

10. Плазменная стерилизация – самый современный метод стерилизации. Она проводится в плазменных стерилизаторах в сухой атмосфере при температуре 36°С. В качестве стерилизующего агента используются пары водного раствора пероксида водорода и низкотемпературная плазма. Такая технология отличается максимально щадящим воздействием на конструкционные материалы медицинских изделий, что дает уникальные возможности для многократной стерилизации изделий, содержащих высококачественную оптику, электронику, инструментов со специальными покрытиями или красками, а также изделий, содержащих узкие, с трудом поддающиеся стерилизации каналы, которые могут стать входными воротами для инфицирования больного в стационаре.

11. С целью профилактики сывороточного гепатита В и ВИЧ рекомендуется использовать предметы одноразового пользования (шприцы, инъекционные иглы, системы для переливания крови и др.)

Особенности организации работы с ВИЧ-инфицированными пациентами.

В соответствии с Федеральным законом от 30.03.1995 г. № 38-РФ «О предупреждении распространения в Российской Федерации заболевания, вызванного вирусом иммунодефицита человека (ВИЧ-инфекции)» при оказании медицинской помощи ВИЧ-инфицированным в целях предупреждения распространения инфекции, снижения контактов до минимума, сохранения врачебной тайны и целенаправленного проведения дезинфекционных мероприятий целесообразно размещать пациентов в отдельные помещения, предусмотрев оснащение этих помещений всем необходимым оборудованием. Изоляция в буксированные отделения необходима лишь при наличии у ВИЧ-инфицированных кровотечений, кровохарканья, открытых форм туберкулеза. При невозможности изоляции ВИЧ-инфицированных в специальные отделения рекомендуется проводить все лечебные манипуляции в последнюю очередь, после запланированных.

ВИЧ-инфекция является инфекционным заболеванием с достаточно ограниченным числом возможных путей передачи, из знания которых и надо исходить при работе с больными. При обычном физикальном осмотре никаких дополнительных мер защиты не требуется, если на коже рук нет повреждений. Если таковые имеются, их необходимо заклеить пластырем. При работе с биологическими субстратами больных ВИЧ-инфекцией или проведении манипуляций необходимо применять меры в соответствии с временными инструктивно-методическими указаниями Минздрава РФ "Организация мероприятий по профилактике и борьбе со СПИДом в РСФСР" от 22.08.91.

Наиболее реальная опасность заражения возникает при разрывах и проколах перчаток, что может привести к попаданию зараженного материала на кожу, возможно имеющую микротравмы, и особенно при уколах и порезах. Для снижения вероятности заражения в таких случаях рекомендуется:

1. При подготовке к проведению манипуляции больному с ВИЧ-инфекцией убедиться в целостности аварийной аптечки.

2. Выполнять манипуляции в присутствии второго специалиста, который может в случае разрыва перчаток или пореза продолжить ее выполнение.

3. Обработать кожу ногтевых фаланг йодом перед надеванием перчаток.

4. При попадании зараженного материала на кожу обработать ее 70% раствором спирта, обмыть водой с мылом и повторно обеззаразить 70% раствором спирта. При попадании заразного материала на слизистые оболочки их немедленно обрабатывают 0,05% раствором марганцевокислого калия, рот и горло прополаскивают 70% спиртом или 0,05% раствором марганцевокислого калия. Не тереть!

При уколах и порезах выдавить из ранки кровь и обработать ранку 5% раствором йода. Рекомендуется профилактический прием тимозида (АЗТ) 800 мг/сут. в течение 30 дней.

Инструкция по технике безопасности при работе с биоматериалом, потенциально-инфицированным ВИЧ

I. Общие положения

СПИД — заболевание со смертельным исходом, развивающееся в результате нарушения функций иммунной системы. Инкубационный период заболевания 5-10 лет. Случаев спонтанного выздоровления или излечения от СПИДа не отмечено. Возбудители — T-лимфотропные ретровирусы HTLV-3 (HIV-1) и HTLV-4 (HIV-2). Пути передачи — с кровью (клетки, сыворотка), половой, от матери к детям с грудным молоком. Вирусы нестойки — погибают после 30-минутной экспозиции в 20% растворе этилового спирта. Поэтому все меры, предусмотренные для предотвращения поражения вирусами гепатита, достаточны и для защиты от инфекции вирусами ВИЧ. При работе с инфекционным материалом необходимо соблюдать три основных правила: менять халат, работать в одноразовых перчатках и чаще мыть руки.



II. Правила работы

1. Работать в отделении следует в специально предназначенных для этого халатах. Хранить их необходимо в шкафу при входе в отделение, надевать перед работой, снимать при выходе из отделения.

2. Вся мебель и оборудование в отделении должны иметь пластиковое или металлическое покрытие, легко поддающееся дезинфекции. На столах должны стоять емкости с дезинфицирующим раствором (70% раствор этилового спирта).

3. Пробирки с биоматериалом должны быть промаркированы, тщательно закрыты (пробки, парафин, пластырь) и доставляться в небьющихся контейнерах, легко поддающихся дезинфекции.

4. Все работы, связанные с приемкой биоматериала и постановкой метода, необходимо делать в одноразовых перчатках. Во время работы все повреждения на руках должны быть закрыты (лейкопластырь, напалечник).

5. Центрифугирование пробирок с биоматериалом необходимо проводить в центрифуге, имеющей отдельные крышки на каждом стакане.

6. При работе с биоматериалом следует пользоваться средствами, предохраняющими глаза от попадания жидкости (защитное стекло, щиток, очки).

7. Все одноразовые материалы, контактировавшие с исследуемым биоматериалом (пробки, наконечники, клеящая бумага, перчатки) необходимо сразу же после использования сбрасывать в специальную емкость с дез. раствором (70% этиловый спирт). По окончанию работы все рабочие поверхности (столы, оборудование) протереть тампоном, смоченным дез. раствором. Все использованные при постановке одноразовые материалы (тестовые пробирки, перчатки, наконечники, пробки, платы и пр.) замочить в дез. растворе.



Систематизация приборов, процессов обработки и средств для дезинфекции и стерилизации в стоматологии

Классификация инструментов

Основные типы инструментов

Характер обработки и виды воздействий

Критические — проникают в стерильные ткани или сосуды


Все инвазивные хирургические инструменты, имеющие контакт с кровоснабжаемыми тканями, скальпели, иглы шприцов, имплантаты, боры, корневые иглы, экскаваторы, зонды, гладилки.


Стерилизация — вирулицидные, спороцидные, туберкулоцидные, бактерицидные воздействия. Длительная экспозиция: гаммалучи, плазма, длительная газовая и химическая стерилизация, автоклавирование (2 атм. 15 мин), сухой жар (максим. режим, 2 часа)

Полукритические — соприкасаются со слизистыми оболочками (за исключением ряда стоматологических инструментов перечисленных выше.

Гибкие эндоскопы, катетеры, инструменты аналогичные гибким эндоскопам, зеркала, коронки, наконечники турбин, а также оттиски (слепки) зубов.


Дезинфекция высокого уровня — вирулицидные, спороцидные, туберкулоцидные, бактерицидные воздействия. Кратковременная экспозиция: гаммалучи, плазма, кратковременная газовая и химическая стерилизация, автоклавирование (1-1,5 атм. 15 мин), сухой жар.

Термометры для измерения температуры слизистой оболочки, ванны для гидротерапии, УЗ-ванночки и УФ-лампы стоматологов, физиотерапевтические инструменты, ложки для слепков.

Дезинфекция среднего уровня: вирулицидные, туберкулоцидные, бактерицидные воздействия.

Средства для химической дезинфекции с указанием на маркировке туберкулоцидной активности.



Некритические - соприкасаются с неповрежденной кожей


Термометры для измерения температуры кожных покровов, стетоскопы, манжетки аппаратов для измерения давления, настольные приборы и т.п.

Дезинфекция низкого уровня: бактерицидные воздействия. Средства для химической дезинфекции без указания на маркировке наличия туберкулоцидной активности.



Контрольные вопросы

  1. Объясните важность асептики в стоматологии.

  2. Что такое дезинфекция? Какие методы дезинфекции вы знаете?

  3. Что такое стерилизация? Какие методы стерилизация вы знаете?

  4. Какие правила необходимо соблюдать при работе с ВИЧ-инфицированными пациентами?

  5. Какие инструменты относятся к критическим?

  6. Как нужно обрабатывать полукритические инструменты?


Список литературы

Обязательная:

  1. Борисов Л.Б. Медицинская микробиология, вирусология, иммунология. – М.: ООО «Медицинское информационное агентство», 2001. – 736 с.

  2. Коротяев А.И., Бабичев С.А. Медицинская микробиология, иммунология и вирусология: Учебник для мед. вузов. – СПб.: СпецЛит, 2002. – 591 с.

  3. Поздеев О.К. Медицинская микробиология / Под ред. В.И. Покровского. – М.: ГЭОТАР-Медиа, 2005. – 768 с.

Дополнительная:

  1. Ахременко Я.А. Микробиология полости рта: Учебное пособие для студентов стоматологических факультетов. – Якутск: Изд-во Якутского госуниверситета, 2008. – 107 с.

  2. Зеленова Е.Г., Заславская М.И., Салина Е.В., Рассанов СП. Микрофлора полости рта: норма и патология: Учебное пособие. Нижний Новгород: Издательство НГМА, 2004. - 158с.

  3. Микробиология, вирусология и иммунология: учеб. для студентов мед. вузов / под ред. В. Н. Царёва. — М.: Практическая медицина, 2009. — 581 с.: ил.

  4. Практикум лабораторных работ с иллюстрированными ситуационными заданиями по микробиологии, иммунологии и вирусологии / под ред. А.А. Воробьева, В.Н. Царева. – М.: ООО « Медицинское информационное агентство», 2008. – 320 с.: ил.

  5. Приказ Министерства здравоохранения СССР №408 от 12 июля 1989 г. «О мерах по снижению заболеваемости вирусными гепатитами в стране».

  6. Приказ №170 Министерства здравоохранения и медицинской промышленности РФ от 16.08.1994 «О мерах по совершенствованию профилактики и лечения ВИЧ-инфекции в Российской Федерации».


Занятие № 9.
Контрольное занятие по разделу: «Микробиология полости рта»
Цель: проверить знания по разделу: «Микробиология полости рта».
Знать: роль нормальной микрофлоры полости рта в норме и при различных патологиях, особенности микробиологической диагностики стоматологических заболеваний.
Вопросы для самоподготовки:

  1. Нормальная и резидентная микрофлора полости рта. Роль нормальной микрофлоры полости рта.

  2. Основные биотопы полости рта и их микрофлора.

  3. Динамика формирования микробиоценоза полости рта. Возрастные особенности.

  4. Основные представители стабилизирующих видов бактерий полости рта: S.sanguis, S.salivarius, S.mitis, вейллонеллы, нейссерии, коринебактерии, лактобактерии.

  5. Анаэробные и микроаэрофильные стрептококки. Характеристика. Роль в развитии патологических процессов полости рта.

  6. Актиномицеты, лакто- и бифидобактерии полости рта. Характеристика. Роль в развитии патологических процессов.

  7. Бактероиды полости рта. Характеристика. Роль в развитии патологических процессов полости рта.

  8. Адгезия микробов к пломбировочным, реконструктивным и ортопедическим материалам. Влияние протезов на микрофлору полости рта.

  9. Неспецифическая резистентность и иммунитет полости рта. Понятия, основные факторы.

  10. Факторы неспецифической резистентности полости рта. Факторы слюны.

  11. Специфические факторы антимикробной резистентности, действующие в полости рта. Гуморальные факторы специфической резистентности полости рта.

  12. Клеточные факторы резистентности полости рта, специфические и неспецифические.

  13. Зубная бляшка, механизм ее формирования, локализация. Роль биосинтеза гликанов. Адгезия и коаггрегация бактерий.

  14. Факторы, способствующие развитию кариеса. Роль резидентной микрофлоры в развитии кариеса. Патогенез кариеса.

  15. Микрофлора при кариесе. Кариесогенные виды микробов: микроаэрофильные стрептококки, актиномицеты, лактобактерии. Антагонисты кариесогенных бактерий.

  16. Микробиологические методы изучения микрофлоры и способы забора материала при кариесе и его осложнениях.

  17. Микрофлора при болезнях пародонта.

  18. Пародонтопатогенные виды микробов: превотеллы, порфиромонады, актиномицеты.

  19. Механизм и условия возникновения заболеваний пародонта.

  20. Методы и особенности забора материала для исследования микрофлоры при заболеваниях пародонта.

  21. Одонтогенная инфекция челюстно-лицевой области. Условия и особенности развития одонтогенного воспаления.

  22. Роль нормальной микрофлоры в развитии одонтогенного воспаления. Особенности состава микрофлоры при одонтогенных и неодонтогенных воспалительных процессах челюстно-лицевой области.

  23. Исследование микрофлоры при одонтогенных заболеваниях.

  24. Острые бактериальные стоматиты. Этиология. Патогенез. Лечение. Профилактика.

  25. Хронические бактериальные инфекции, проявляющиеся в полости рта. Этиология. Патогенез. Лечение. Профилактика.

  26. Вирусные и грибковые стоматиты полости рта. Этиология. Патогенез. Лечение. Профилактика.

  27. Дисбактериозы ротовой полости. Фузоспирохетоз и кандидоз.

  28. Микробиологическая диагностика стоматитов.

  29. Способы забора патологического материала из полости рта для проведения микробиологического исследования.

  30. Принципы асептики в стоматологии.


Список литературы

Обязательная:

  1. Борисов Л.Б. Медицинская микробиология, вирусология, иммунология. – М.: ООО «Медицинское информационное агентство», 2001. – 736 с.

  2. Коротяев А.И., Бабичев С.А. Медицинская микробиология, иммунология и вирусология: Учебник для мед. вузов. – СПб.: СпецЛит, 2002. – 591 с.

  3. Поздеев О.К. Медицинская микробиология / Под ред. В.И. Покровского. – М.: ГЭОТАР-Медиа, 2005. – 768 с.

Дополнительная:

  1. Ахременко Я.А. Микробиология полости рта: Учебное пособие для студентов стоматологических факультетов. – Якутск: Изд-во Якутского госуниверситета, 2008. – 107 с.

  2. Зеленова Е.Г., Заславская М.И., Салина Е.В., Рассанов СП. Микрофлора полости рта: норма и патология: Учебное пособие. Нижний Новгород: Издательство НГМА, 2004. - 158с.

  3. Микробиология, вирусология и иммунология: учеб. для студентов мед. вузов / под ред. В. Н. Царёва. — М.: Практическая медицина, 2009. — 581 с.: ил.

  4. Практикум лабораторных работ с иллюстрированными ситуационными заданиями по микробиологии, иммунологии и вирусологии / под ред. А.А. Воробьева, В.Н. Царева. – М.: ООО « Медицинское информационное агентство», 2008. – 320 с.: ил.



: files -> dep medeiib.pnzgu.ru
files -> Лекция №1. «Введение. Анатомо-физиологические аспекты органов ротовой полости и их особенности у различных видов животных»
files -> Стоматология
files -> Стоматология
files -> Учебный план дополнительной профессиональной программы повышения квалификации «Стоматологическая помощь населению»
files -> Учебно-тематический план дополнительной профессиональной программы повышения квалификации «Стоматологическая помощь населению»
files -> Терапевтическая стоматология


1   2   3   4


База данных защищена авторским правом ©stomatologo.ru 2017
обратиться к администрации

    Главная страница